Анализ современных методов оценки состояния эндотелия
https://doi.org/10.18705/2782-3806-2026-6-1-56-67
Аннотация
Актуальность. Эндотелий сосудов представляет собой ключевой орган, регулирующий гемостаз, вазодилатацию и антикоагулянтный баланс. Эндотелиальная дисфункция (ЭД) играет центральную роль в патогенезе атеросклероза, тромбозов, воспалительных заболеваний и осложнений COVID-19, проявляясь снижением NO-зависимой вазодилатации, активацией коагуляции и потерей атромбогенных свойств внутренней выстилки сосудистой стенки. Оценка состояния эндотелия имеет высокий клинический потенциал для диагностики, прогнозирования и мониторинга терапии, однако существующие методы имеют ограничения в специфичности, воспроизводимости и интерпретации. Цель. Систематизировать современные данные о преимуществах и недостатках методов оценки функции эндотелия, включая биомаркеры, функциональные тесты и коагулологические подходы. Материалы и методы. Проведен систематический поиск литературы в базах PubMed, PMC, ResearchGate, Scopus, Web of Science за 2000–2026 гг. по ключевым словам: “endothelial dysfunction assessment”, “hemostasiology biomarkers” и др. Включены обзоры, метаанализы, оригинальные исследования на английском и русском языках; исключены абстракты, клинические случаи без статистики. Результаты. Биомаркеры (vWF, sPECAM-1, sP-селектин, VEGF, PGI2, эндокан, синдеканы) отражают активацию и повреждение эндотелия, но неспеци фичны при воспалении. Функциональные тесты (FMD, вискозиметрия) оценивают вазореактивность и реологию, но зависят от стандартизации. Коагулологические методы (агрегация тромбоцитов, активность протеина C) косвенно указывают на дисфункцию. Перспективны проточная цитометрия (CECs, EVs) и микрофлюидные камеры для клеточного анализа. Заключение. Комбинация методов предпочтительна для комплексной оценки; перспективы — в стандартизированных протоколах для прогнозирования тромботических рисков и терапии.
Ключевые слова
Об авторах
А. Ю. ЩаповаРоссия
Щапова Ангелина Юрьевна — лаборант-исследователь научно-исследовательской лаборатории иммуногенетики и диагностики иммунологических конфликтов
ул. 2-Советская, д. 16, Санкт-Петербург, 191024
О. Ю. Матвиенко
Россия
Матвиенко Олеся Юрьевна — кандидат медицинских наук, ведущий научный сотрудник научно-исследовательского отдела патологии гемостаза
Санкт-Петербург
И. И. Кробинец
Россия
Кробинец Ирина Ивановна — доктор биологических наук, руководитель научно-исследовательской лаборатории иммуногенетики и диагностики иммунологических конфликтов
Санкт-Петербург
С. В. Гавровская
Россия
Гавровская Светлана Викторовна — младший научный сотрудник научно-исследовательской лаборатории иммуногенетики и диагностики иммунологических конфликтов
Санкт-Петербург
Н. Н. Силина
Россия
Силина Наталья Николаевна — кандидат медицинских наук, руководитель научно-исследовательского отдела патологии гемостаза
Санкт-Петербург
Список литературы
1. Хаертынов Х. С., Анохин В. А., Халиуллина С. В. и др. Маркеры эндотелиальной дисфункции у реконвалесцентов коронавирусной инфекции COVID-19. Практическая медицина. 2024;22(1):58‒63. https://doi.org/10.32000/2072-1757-2024-1-58-63, https://elibrary.ru/drhlsa
2. Vischer UM. Von Willebrand factor, endothelial dysfunction, and cardiovascular disease. J Thromb Haemost. 2006;4(6):1186‒93. https://doi.org/10.1111/j.1538-7836.2006.01949.x
3. Pan Y, Guo R, Lv Y, et al. The role of von Willebrand factor antigen in predicting survival of patients with HBV-related cirrhosis. Can J Gastroenterol Hepatol. 2022;2022:9035971. https://doi.org/10.1155/2022/9035971
4. Choudhary S, Sharma K, Singh PK. Von Willebrand factor: a key glycoprotein involved in thrombo-inflammatory complications of COVID-19. Chem Biol Interact. 2021;348:109657. https://doi.org/10.1016/j.cbi.2021.109657
5. Wang X, He B. Endothelial dysfunction: molecular mechanisms and clinical implications. MedComm. 2024;5(6):e651. https://doi.org/10.1002/mco2.651
6. Tsiatsiou P, Pilalas D, Tsaireli V, et al. Biomarkers of endothelial damage and disease severity in COVID-19 patients. Curr Issues Mol Biol. 2025;47(6):409. https://doi.org/10.3390/cimb47060409
7. Brown AM, Nock S, Musgrave K, et al. Vascular endothelial growth factor (VEGF) as a biomarker for cancer-associated venous thrombosis: a meta-analysis. TH Open. 2025;9:e25134381. https://doi.org/10.1055/a-2513-4381
8. Ferrara N. Vascular endothelial growth factor: basic science and clinical progress. Endocr Rev. 2004;25(4):581‒611. https://doi.org/10.1210/er.2003-0027
9. De Pablo-Moreno JA, Serrano LJ, Revuelta L, et al. The vascular endothelium and coagulation: homeostasis, disease, and treatment, with a focus on the von Willebrand factor and factors VIII and V. Int J Mol Sci. 2022;23(15):8283. https://doi.org/10.3390/ijms23158283
10. Olgasi C, Assanelli S, Cucci A, et al. Hemostasis and endothelial functionality: the double face of coagulation factors. Haematologica. 2024;109(7):2041‒2048. https://doi.org/10.3324/haematol.2022.282272
11. Argentino G, Olivieri B, Barbieri A, et al. Exploring the utility of circulating endothelial cell-derived extracellular vesicles as markers of health and damage of vasal endothelium in systemic sclerosis patients treated with iloprost. Biomedicines. 2024;12(2):295. https://doi.org/10.3390/biomedicines12020295
12. Stitham J, Midgett C, Martin KA, et al. Prostacyclin: an inflammatory paradox. Front Pharmacol. 2011;2:24. https://doi.org/10.3389/fphar.2011.00024
13. Zilberman-Rudenko J, Sylman JL, Garland KS, et al. Utility of microfluidic devices to study the platelet-endothelium interface. Platelets. 2017;28(5):449‒456. https://doi.org/10.1080/09537104.2017.1280600
14. Bidlan M, Kumar M, Bhargava A, et al. Endocan, a potential biomarker of endothelial dysfunction: a brief overview. Angiology. 2025:33197251356576. https://doi.org/10.1177/00033197251356576
15. Chen C, Ge X, Fu D, et al. Endothelial cell-specific molecule-1 (ESM1): an endogenous anticoagulant and protective factor in venous thrombosis. Adv Sci (Weinh). 2026:e15994. https://doi.org/10.1002/advs.202515994
16. Khatri S, Suchday P, Guddeti A, et al. Endocan as a novel biomarker for endothelial dysfunction and cardiovascular prognosis in ST-elevation myocardial infarction: a contemporary literature review. J Pers Med. 2025;16(1):7. https://doi.org/10.3390/jpm16010007
17. Zhou G, Liu J, Zhang H, et al. Elevated endothelial dysfunction-related biomarker levels indicate the severity and predict sepsis incidence. Sci Rep. 2022;12(1):21935. https://doi.org/10.1038/s41598-022-26623-y
18. Kadıyoran C, Yılmaz PD, Göktepe MH, et al. Syndecan-1 as a biomarker for cardiovascular risk in patients with Behçet’s disease. Arch Rheumatol. 2025;40(4):435‒442. https://doi.org/10.5152/ArchRheumatol.2025.11178
19. Giuliani A, Ramini D, Sbriscia M, et al. Syndecan 4 is a marker of endothelial inflammation in pathological aging and predicts long-term cardiovascular outcomes in type 2 diabetes. Diabetol Metab Syndr. 2024;16(1):203. https://doi.org/10.1186/s13098-024-01431-8
20. Mućka S, Miodońska M, Jakubiak GK, et al. Endothelial function assessment by flow-mediated dilation method: a valuable tool in the evaluation of the cardiovascular system. Int J Environ Res Public Health. 2022;19(18):11242. https://doi.org/10.3390/ijerph191811242
21. Васина Е. Ю., Малахова З. Л., Аносов И. А. и др. Оценка эндотелий-зависимой вазодилатации в клинике: какой эндотелиальный фактор мы изучаем? Артериальная гипертензия. 2020;26(2):211‒218. https://doi.org/10.18705/1607-419X-2020-26-2-211-218, https://www.elibrary.ru/ktmywn
22. Thijssen DHJ, Black MA, Pyke KE, et al. Assessment of flow-mediated dilation in humans: a methodological and physiolog-ical guideline. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2011;300(1):H2‒H12. https://doi.org/10.1152/ajpheart.00471.2010
23. Yoon I, Han JH, Jeon HJ. Advances in platelet-dysfunction diagnostic technologies. Biomolecules. 2024;14(6):714. https://doi.org/10.3390/biom14060714
24. Le Blanc J, Mullier F, Vayne C, et al. Advances in platelet function testing–light transmission aggregometry and beyond. J Clin Med. 2020;9(8):2636. https://doi.org/10.3390/jcm9082636
25. Larsen JB, Hvas AM, Hojbjerg JA. Platelet function testing: update and future directions. Semin Thromb Hemost. 2023;49(6):600‒608. https://doi.org/10.1055/s-0042-1757898
26. Korolova DS, Platonova TM, Gornytska OV, et al. Diagnostic value of protein C depletion in pathologies associated with the activation of the blood coagulation system. Int J Mol Sci. 2025;26(13):6122. https://doi.org/10.3390/ijms26136122
27. Roshan TM, Stein N, Jiang XY. Comparison of clotbased and chromogenic assay for the determination of protein c activity. Blood Coagul Fibrinolysis. 2019;30(4):156‒160. https://doi.org/10.1097/MBC.0000000000000806
28. Matsuda R, Someya R, Kobayashi M, et al. A quantitative assay system for protein C activity, the regulator of blood coagulation, based on a chromogenic method mimicking the blood coagulation cascade. Pract Lab Med. 2023;37:e00345. https://doi.org/10.1016/j.plabm.2023.e00345
29. Феоктистова В. С., Вавилова Т. В., Сироткина О. В. и др. Новый подход к оценке дисфункции эндотелия: определение количества циркулирующих эндотелиальных клеток методом проточной цитометрии. Клиническая лабораторная диагностика. 2015;4:23‒39. https://www.elibrary.ru/tseqjn
30. Mund JA, Estes ML, Yoder MC, et al. Flow cytometric identification and functional characterization of immature and mature circulating endothelial cells. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2012;32(4):1045‒1053. https://doi.org/10.1161/ATVBA-HA.111.244210
31. Danova M, Comolli G, Manzoni M, et al. Flow cytometric analysis of circulating endothelial cells and endothelial progenitors for clinical purposes in oncology: a critical evaluation. Mol Clin Oncol. 2016;4(6):909‒917. https://doi.org/10.3892/mco.2016.823
32. Zhou F, Zhou Y, Yang M, et al. Optimized multiparametric flow cytometric analysis of circulating endothelial cells and their subpopulations in peripheral blood of patients with solid tumors: a technical analysis. Cancer Manag Res. 2018;10:447‒464. https://doi.org/10.2147/CMAR.S157837
33. Lanuti P, Santilli F, Marchisio M, et al. A novel flow cytometric approach to distinguish circulating endothelial cells from endothelial microparticles: relevance for the evaluation of endothelial dysfunction. J Immunol Methods. 2012;380(1):16‒22. https://doi.org/10.1016/j.jim.2012.03.007
34. Woywodt A, Blann AD, Kirsch T, et al. Isolation and enumeration of circulating endothelial cells by immunomagnetic isolation: proposal of a definition and a consensus protocol. Journal of thrombosis and haemostasis. 2006;4(3):671–677. https://doi.org/10.1111/j.1538-7836.2006.01794.x
35. Mannino RG, Pandian NK, Jain A, et al. Engineering “endothelialized” microfluidics for investigating vascular and hematologic processes using non-traditional fabrication techniques. Curr Opin Biomed Eng. 2018;5:13‒20. https://doi.org/10.1016/j.cobme.2017.11.006
36. Ohta M, Sakamoto N, Funamoto K, et al. A review of functional analysis of endothelial cells in flow chambers. J Funct Biomater. 2022;13(3):92. https://doi.org/10.3390/jfb13030092
37. Большакова С. Е., Мадаева И. М., Бердина О. Н. и др. Биомаркеры эндотелиальной дисфункции как фактора риска развития сердечно-сосудистых заболеваний при синдроме обструктивного апноэ сна. Профилактическая медицина. 2022;25(8):114‒119. https://doi.org/10.17116/profmed202225081114
Рецензия
Для цитирования:
Щапова А.Ю., Матвиенко О.Ю., Кробинец И.И., Гавровская С.В., Силина Н.Н. Анализ современных методов оценки состояния эндотелия. Российский журнал персонализированной медицины. 2026;6(1):56-67. https://doi.org/10.18705/2782-3806-2026-6-1-56-67
For citation:
Shchapova A.Yu., Matvienko O.Yu., Krobinets I.I., Gavrovskaya S.V., Silina N.N. Analysis of modern methods for assessing endothelial condition. Russian Journal for Personalized Medicine. 2026;6(1):56-67. (In Russ.) https://doi.org/10.18705/2782-3806-2026-6-1-56-67
JATS XML














